熒光共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)是一種非輻射能量躍遷,通過分子間的電偶極相互作用,將供體激發(fā)態(tài)能量轉(zhuǎn)移到受體激發(fā)態(tài)的過程。此過程沒有光子的參與,所以是非輻射的。該分析方法具有快速、敏感和簡單等優(yōu)點(diǎn)。
用于FRET試驗的染料是可以相同的。但在大多數(shù)應(yīng)用中其實是使用不同的染料。簡單地說,熒光共振能量轉(zhuǎn)移是在供體基團(tuán)的激發(fā)狀態(tài)下由一對偶極子介導(dǎo)的能量從供體(染料1)向受體(染料2)轉(zhuǎn)移的過程。通常,供體 (Donor)熒光基團(tuán)的發(fā)射光譜要與受體(Acceptor)基團(tuán)的吸收光譜有一定的重疊。當(dāng)這兩個熒光基團(tuán)間的距離合適時(10 – 100 ?)),就可觀察到熒光能量由供體向受體轉(zhuǎn)移的現(xiàn)象。能量轉(zhuǎn)移發(fā)生方式依賴于受體的化學(xué)結(jié)構(gòu):
一個供體基團(tuán)(EDANS)和接受基因(DABCYL)勻被連接到一HIV蛋白酶的天然底物上,當(dāng)該底物未被切斷時,DABCYL可淬滅EDANS,從而檢測不到熒光。當(dāng)該底物被HIV-1蛋白酶切斷后,EDANS不再被DABCYL淬滅,隨即可檢測到EDANS熒光。蛋白酶抑制劑的有效性可憑借EDANS熒光強(qiáng)度的變化進(jìn)行監(jiān)測。
FRET肽是研究肽酶特異性的便利工具,由于其反應(yīng)過程可被連續(xù)監(jiān)測,為酶活性的檢測提供了一個便捷的方法。供體/受體對的肽鍵水解后產(chǎn)生的熒光可衡量納摩爾級濃度的酶活性。當(dāng)FRET肽是完整的,表現(xiàn)出的是內(nèi)部的熒光猝滅,但當(dāng)供體/受體對的任何肽鍵斷裂就會釋放出熒光,此熒光可被連續(xù)檢測,從而可對酶的活性進(jìn)行定量分析。
FRET 肽可作為各類酶研究的合適底物,比如:
以下是一些用于FRET的標(biāo)準(zhǔn)染料組合::
在蛋白酶的多肽底物內(nèi)經(jīng)共振能量轉(zhuǎn)移引發(fā)熒光猝滅的供體-接受對
|
波長(nm) |
||
猝滅劑 |
熒光團(tuán) |
激發(fā)波 |
發(fā)射波 |
Dabcyl |
Edans |
336 |
490 |
常規(guī)RET供體-接受對的福斯特臨界距離(Forster Critical Distance)
Donor |
Aceptor |
Forster Distance |
Tryptophan |
Dansyl |
2.1 |
(1): 5-(2-iodoacetylaminoethyl)aminonaphthalene-1-sulfonic acid
(2): N-(4-dimethylamino-3,5-dinitrophenyl) maleimide
(3): carboxyfluorescein succinimidyl ester
(4): 4,4-difluoro-4-bora-3a, 4a-diaza-s-indacene